Milieu réactionnel

on introduit dans le système 5 mL d'une solution de chlorure de fer III. Au bout d'un temps déterminé, on prélève 10,0 mL du mélange réactionnel que l'on verse dans un bécher d'eau glacée. On titre alors le contenu du bécher par une solution de permanganate de potassium afin de déterminer la concentration en peroxyde d'hydrogène se trouvant dans le milieu réactionnel. On obtient les résultats suivants : t(min) [H2O2] mol.L -1 – 0 7,3010 -2 5 5,2510 -2 10 4,2010 -2 20 2,3510 -2

température modérée, OH se comportera plutôt comme un nucléophile. En solution concentrée et en chauffant le milieu réactionnel, il se comportera plutôt comme une base. De toute façon, étant donné la dualité d’action nucléophile/basique, on observe parfois une compétition entre la SN et l’élimination (c’est-à-dire qu’un certain nombre de molécules d’halogénoalcane vont passer par le chemin réactionnel d’une SN, et d’autres par celui d’une élimination : on obtiendra à la fin de la réaction un mélange de

cinétiques de l’enzyme. 5) Pour étudier la dépendance de la vitesse d’une réaction enzymatique catalysée par une enzyme vis-à-vis de la concentration en substrat, 20 µl d’une solution enzymatique de concentration 4.10-6M sont ajoutés à des milieux réactionnels de 10 ml contenant différentes concentrations en substrat. Les vitesses initiales de la réaction sont mesurées. On obtient les résultats suivants : [S] en M 5 x 10-2 5 x 10-3 5 x 10-4 1,0 x 10-4 5,0 x 10-5 1,0 x 10-5 Vi en (µmol :min) 0

utiliser deux méthodes: Utilisation d'un indicateur coloré : Quelques gouttes d'indicateur coloré sont ajoutées dans le bécher contenant le réactif titré ; à l'équivalence il se produit un changement de couleur. Mesures du pH : On mesure le pH du milieu réactionnel au fur et à mesure de l'ajout du réactif titrant, on trace alors la courbe donnant les variations du pH. À partir de cette courbe, on détermine l'équivalence. C'est cette méthode qui sera utilisée lors de ce TP. ↸ à faire avant le TP II.

l’homme sain • substance toxique • sans effet à petite dose • à plus forte dose développement d’un tableau clinique semblable à celui rencontré chez des malades La pratique de L’homéopathie C’est la découverte expérimentale d’une physiologie réactionnelle 5 5 Les contemporains Edward JENNER (1749-1823) La similitude Travaux sur l’innoculation de la variole 1796 La pratique de L’homéopathie “…la vérole de la vache est un préservatif contre l’infection de la petite vérole…” 6 6

L [pic]= 5,0(10–1 mol. 2.5.2. Degré Chlorométrique °chl = V(Cl2) = [pic]×Vm °chl = 5,0(10–1×22,4 = 11°chl. L’erreur relative est de [pic]= 6,7%, elle est relativement importante ce qui peut s’expliquer par le fait que la température du milieu réactionnel n’est pas de 0°C (Alors le volume molaire est différent : 24 L.mol–1 à 25°C)

INTRODUCTION A LA CINETIQUE CHIMIQUE   La cinétique chimique a pour objet d’étudier la vitesse de formation, de proposer des mécanismes, donc de définir des chemins réactionnels. La cinétique commence par la cinétique empirique, c’est à dire la détermination des relations algébriques entre la concentration et le temps.   Pour établir les règles de cinétique empirique, il faut des méthodes de détermination de la concentration en fonction du temps, soit par spectroscopie (permet de mesurer la concentration

et enfin le gène de la [pic]-galactosidase. Cette enzyme est capable de cliver le X-gal (sucre semblable au galactose) et de libérer le X, substance chimique de couleur bleue. Les cellules contenant le pUT 807 seront donc facilement repérables sur milieu minimum additionné d’X-gal (colonies bleues). 4. Intérêt du plasmide pUT 807 Les trois protéines sont sous la dépendance d’un seul promoteur. Un seul ARNm sera donc synthétisé pour les trois protéines. La protéine recombinante

n’est pas encore atteint. 1.1. Étude des quantités de matière initiales des réactifs 1.1.1. Calculer la quantité de matière n1 d’acide éthanoïque introduite dans le flacon. 1.1.2. Montrer que le mélange réalisé est équimolaire. 1.2. Étude du milieu réactionnel au bout de six mois Au bout de six mois, le flacon est ouvert et on y prélève un volume V = 2,0 mL du mélange. L'acide éthanoïque restant dans ce prélèvement est dosé, à froid, à l’aide d’une solution d’hydroxyde de sodium de concentration CB

de salive Le substrat est une solution d’amidon Indicateur coloré : Di-Nitro-Salicylate (DNS), le DNS jaune est réduit en DNS rouge orangé On peut donc suivre l'apparition du DNS au cours de la réaction en enregistrant l'absorbance du mélange réactionnel en fonction du temps. Méthode : Mesure de l’absorbance par spectrophotométrie à 540 nm. Précipitation à l'éthanol. Le principal inconvénient de cette méthode est le grand volume d'EtOH qu'on doit utiliser, au moins quatre fois celui de la