Pipette automatique

quantité de matière de diiode en excès. (01,25 pts) 5) En déduire la masse d’acide ascorbique contenue dans le jus d’orange dosé. (01,25 pts) Matière d’œuvre pour un candidat - Jus d’orange ; - Entonnoir + filtre ; - Un verre à pied ; - Pipette jaugée de 20 ml ; - Pipette jaugée de 10 ml ; - Pipeteur ; - Un bécher ; - Agitateur magnétique ; - Une burette graduée de 25 ml ; - Empois d’amidon ; - Solution de diiode 5.10-3 M ; - Solution de thiosulfate 5.10-4 M. I2 I− C6H6O6 C6H8O6 UNIVERSITE CHEIKH ANTA

vinaigre et titrez jusqu’à la première teinte rose persistante. Notez le volume au centième près. Recommencez jusqu’à ce que chaque membre de l’équipe ait réalisé deux titrages. 7- Rincez à l’eau du robinet et ensuite à l’eau distillée. Quant à la pipette, vous devez d’abord la rincer à l’eau chaude, puis la rincer plusieurs fois à l’eau distillée. La burette d’abord avec une solution de HCl, ensuite avec de l’eau du robinet et en dernier avec l’eau du robinet.

|glucidiques) | |la fiche technique du logiciel utilisé |une seringue de 1 mL, une pipette et une propipette | |une solution de glucose à 10 g.L-1 |papier absorbant

Rapport de biologie : « Echanges d’eau et taille des cellules végétales ». Matériels : * Coutetau * Planche * Tube à essaie * Cylindre gradué * Berlin | * Pipette graduée * Statif * Pipette * Sel * Agitateur | Mode opératoire : * Éplucher une grosse pomme de terre. * Découper des tranches d’environ 5mm d’épaisseur et 40 mm de long. * Découper dans le rectangle une dizaine de frites identique de 5mm de large. * Planger chaque frite dans un tube à hémolyse

coloration ; Bain marie ; Pipette jaugée ; Chronomètre ; Pince en bois ; Eau distillée ; Eponge ; II- Digestion in-vitro : a) Faire chauffer le bain marie jusqu’à une température égale à 37°C ; b) Mettre de l’amidon dans un tube à essais ; c) Rajouter de l’amylase ; d) Mettre le tube à essais dans le bain marie et mettre en marche le chronomètre ; e) Prélever un peu de solution à chaque intervalle de temps et grâce à la pipette jaugée et le mettre sur la plaque

candidats et des compétences mises en œuvre. PAR POSTE CANDIDAT un tableau magnétique des plots aimantés munis d’un axe un ressort une masse à crochet de 100 g une masse à crochet de 200 g une éprouvette graduée un agitateur en verre une pipette jaugée un dynamomètre une règle graduée un chronomètre POSTE EXAMINATEUR Le matériel ci-dessus en réserve, en un exemplaire. REMARQUES En fonction des caractéristiques du ressort utilisé, il conviendra à l’examinateur d’effectuer

• • • • • • • • • • • plaque chauffante agitante + barreau aimanté + cristallisoir support noix de fixation ballon ou erlen thermomètre balance à 0,01 g capsule de pesée couteau ou ciseaux fioles jaugées de 200 mL et 500 mL pipette jaugée de 5 mL et propipette deux béchers de 150 mL entonnoir + support + 2 filtres en papier noir animal et spatule carbonate de potassium bâton en verre Manipulation : • peser avec précision quatre fraises • introduire les quatre fraises

sommes amenés à nous questionner sur les effets des paramètres physico-chimiques sur la contraction du duodénum. II. Matériels et méthodes : a. Matériels Cuve à organe isolé Circuit thermostaté à 38°C Liquide de Tyrode Canne à oxygénation Pipette graduée de 1mL et 10mL Boite de Pétri Fiole jaugée (1L) Béchers Eprouvette de 100mL Oscillographe Capteur de tension Pince Kocher Seringue Aiguilles (0.6*25) Fil Scalpel Rat (un bout d’intestin) Solution d’adrénaline à 100µg/L Solution

déterminer la concentration massique de cette espèce dans la solution considérée en solution. L’opération qui permet cette détermination s’appelle le dosage. 2. Comment procéder ? Dans un bécher, on introduit un colume VA connu (prélevé à la pipette jaugée) de solution à titrer de concentration massique tA à déterminer. Dans une burette graduée, on introduit la solution titrante de concentration massique tB connue. On utilise une réaction de titrage pour pouvoir déterminer la concentration massique

l’échantillon est déposé sur la colonne. On mesure alors en continue l’absorbance à 280 nm (longueur d’onde d’absorption des cycles aromatiques des acides aminés constitutifs des protéines). Tous les dépôts ont été effectués à la pipette pasteur pour la première chromatographie et à la pipette graduée pour la chromatographie d’exclusion en faisant attention de ne pas perturber la surface de la colonne. Chromatographie d’affinité : Dépôt Lavage Elution Après utilisation