Giemsa

distingue les mononucléaires (lymphocytes et monocytes) des polynucléaires. Les granulocytes (ou polynucléaires) On classe les granulocytes en trois catégories, en fonction de la couleur de leurs granules après utilisation du colorant de May-Grünwald Giemsa : • les granulocytes neutrophiles, qui sont des phagocytes bactéricides ; • les granulocytes éosinophiles, qui participent notamment à la lutte contre les parasites ; • les granulocytes basophiles, qui jouent un rôle majeur dans l'inflammation

Tout les matins un contrôle est effectué pour pouvoir confirmer le bon fonctionnement de la machine. L'analyse consiste a interpréter les résultats bruts et de déterminer si une formule manuelle doit être établie ( cf coloration de May Grunwald Giemsa ). Les résultats moyens sont : NUMERATION GLOBULAIRE ET PARAMETRES ERYTHROCYTAIRES  FORMULE LEUCOCYTAIRE  Intérêt : La numération permet de connaître avec une certaine précision le nombre de cellule dans le sang d’un

caractéristiques des cellules sanguines sont résumées dans le tableau de la dernière page. 3. COLORATION Plusieurs techniques de coloration existent pour mettre en évidence les différentes cellules sanguines, mais la plus coutumière est celle de Wright-Giemsa, utilisant de l'éosine, du bleu de méthylène et de Observation des cellules sanguines Page 3 de 4 de l'azur B. Cette coloration va mettre en évidence le cytoplasme, le noyau ainsi que des éléments cytoplasmiques spécifiques des différents

éther). La fixation immédiate, au moment du prélèvement, est indispensable pour préserver les cellules dont seule une bonne conservation permet l'étude cytologique ultérieure. La coloration des lames se fait : - par la technique de May-Grunwald-Giemsa (MGG) utilisée en hématologie - par diverses associations de colorants nucléaires et cytoplasmiques (Papanicolaou, Harris-Shorr) - éventuellement par des colorations particulières dérivées des techniques histochimiques utilisées en histopathologie

systématique permet la détection rapide de la maladie et son traitement avant qu’elle ne progresse, et réduit le nombre de réservoir humain potentiel. Port de vêtement couvrant [pic] Morphologie  20-30µm de long Après coloration au Giemsa, noyau médian rouge, petit point rouge à ces extrémités. Le kinétoplaste est fixé à une membrane, mais est le point de départ d’un flagelle qui ressort à son extrémité postérieur. La membrane est appelée membrane ondulante à cause du mouvement que

condensées alternent avec des zones moins condensée. Les chromomères sont des masses d’hétérochromatine qui apparaissent sombre après coloration au Giemsa Chaque bivalent peut être caractérisé par sa longueur, son centromère et la répartition des chromomères. Le caryotype est possible à ce stade avec un marquage en bande G ou un mariage en bande R (Giemsa). Cela permet de faire le caryotype chr appariés au stade pachytène dans spermatocytes (ovogonies pas accessibles car stade in utero). Faible

plasmocytes. I -LES POLYNUCLEAIRES Les polynucléaires, caractérisés par un noyau multilobé, comportent dans leur cytoplasme des granulations. Ces granulations ont des affinités tinctoriales différentes lorsque le frottis est coloré au May Grünwald Giemsa (MGG) ce qui permet de classer les polynucléaires en trois catégories : - polynucléaires neutrophiles (granulocytes neutrophiles) dont les granulations, fines prennent des colorants neutres - polynucléaires éosinophiles qui comportent de grosses

3.2 Coloration au MGG (May-Grünwald Giemsa) Etape de fixation : verser sur la lame 10 à 15 gouttes de colorant May-Grünwald et laisser agir pendant 3 minutes. Coloration au May-Grünwald : ajouter 10 à 15 gouttes d'eau neutre puis laisser agir pendant 2 minutes. Rejeter le colorant par un jet d’eau neutre, très délicatement. Préparation de la dilution du Giemsa : introduire 7 à 8 gouttes de colorant dans 5 ml d’eau neutre. Coloration au Giemsa : verser la dilution sur la lame. Laisser

examens complémentaires concernant le malade. 1- Cytopathologie Les cellules sont séchées et colorées sur une ou plusieurs lames histologiques, puis examinées au microscope. Les techniques les plus fréquemment utilisées sont celle de May-Grünwald-Giemsa (hématologie) ou la coloration de Papanicolaou (frottis cervico-vaginaux). .2 Biopsie, pièce opératoire et autopsie L’anatomo-pathologiste s’informe des données concernant le spécimen à étudier ou le corps à autopsier. Il en fait l’examen macroscopique

mesure 1.5 x 0.75. A l’aide d’une teinture à base d’aniline, les extrémités du bacille se colorent plus vivement c’est ce que l’on nomme une coloration bipolaire. Cette réaction caractérise le bacille, elle peut se créer avec d’autres colorants : GIEMSA, WAYSON et WRIGHT. Cette bactérie grandit très lentement et on observe au microscope une coloration bipolaire (grâce au bleu de méthylène). Observation de la bactérie Yersinia Pestis au microscope Mise en évidence de la bipolarité des bactéries